VIEW ARTICLE    doi:10.1094/ASBCJ-2010-0629-01

Dried Yeast: Impact of Dehydration and Rehydration on Brewing Yeast DNA Integrity. David M. Jenkins, School of Biosciences, University of Nottingham, Sutton Bonington Campus, Loughborough, UK; Chris D. Powell (1), Lallemand Inc., Montreal, QC, Canada; and Katherine A. Smart (2), School of Biosciences, University of Nottingham, Sutton Bonington Campus, Loughborough, UK. (1) Current address: School of Biosciences, University of Nottingham, Sutton Bonington Campus, Loughborough, UK. (2) Corresponding author. E-mail: <katherine.smart@nottingham.ac.uk>; Phone: +44(0) 1159516214; Fax: +44(0)1159516162. J. Am. Soc. Brew. Chem. 68(3):132-138, 2010.

As a consequence of fluidized bed drying, yeast cells may be exposed to a series of physiological stresses, of which the most evident is water loss. Desiccation can lead to cell wall crenellation, cytoplasmic crowding, loss of DNA supercoiling, membrane disruption, phase transitions, and ultimately cell death. Although the dehydrated phenotype has been well characterized, the sequence of events that causes damage to the cell has not been widely reported. Here we investigate the impact of dehydration and rehydration on the stability of the brewing yeast genome, including both the chromosomal and mitochondrial DNA (mtDNA). Analysis of rehydrated and control yeast populations for chromosome length polymorphisms (karyotyping), DNA sequence changes (PCR analysis of inter-delta sequences), gross mitochondrial damage (presence of respiratory deficient mutants), and mitochondrial sequence changes (mtDNA RFLP [restriction fragment length polymorphisms]) indicated that the genetic constitution of dried yeast is not affected by the drying process. Active dried yeast (ADY) populations also demonstrated an enhanced tolerance to mutagen challenge (targeted at mtDNA), suggesting that the susceptibility of mtDNA to change is not associated with fluidized bed drying. These results demonstrate that the genetic stability of ADY is comparable to control populations. Keywords: Active dried yeast, Genetic stability, Petite mutants, Saccharomyces

Como consecuencia de secado en lecho fluidizado, las células de la levadura puede estar expuesto a una serie de problemas fisiológicos, de los cuales el más evidente es la pérdida de agua. La desecación puede conducir a almenas de la pared celular, citoplasma pérdida de hacinamiento, de la DNA súper enrollado, disrupción de la membrana, transiciones de fase, y finalmente la muerte celular. Aunque el fenotipo deshidratados ha sido bien caracterizada, la secuencia de eventos que causan daños a la célula y no se han reportado. Aquí se investiga el impacto de la deshidratación y rehidratación sobre la estabilidad del genoma de la levadura de cerveza, que incluye tanto el cromosómicas y el ADN mitocondrial (ADNmt). Análisis de rehidratado y las poblaciones de levadura para el control de polimorfismos de longitud de cromosomas (cariotipo), cambios en la secuencia de ADN (análisis de PCR de las secuencias entre delta), el daño mitocondrial bruto (presencia de mutantes deficientes en las vías respiratorias), y cambios en las mitocondrias de secuencia (ADNmt RFLP restricción [longitud de los fragmentos polimorfismos]) señaló que la constitución genética de la levadura seca no se ve afectada por el proceso de secado. Levadura seca activa (LSA) poblaciones también demostró una mayor tolerancia al desafío mutágeno (dirigido a ADNmt), lo que sugiere que la susceptibilidad de ADNmt para cambiar no está asociada con el secado en lecho fluidizado. Estos resultados demuestran que la estabilidad genética del LSA es comparable a controlar las poblaciones. Palabras claves: Estabilidad genética, Levadura seca activa, Mutantes petite, Saccharomyces